У всьому світі Avibacterium paragallinarum є етіологічним агентом інфекційного риніту свійської птиці. Вакцини є найкращим засобом контролю хвороби за рахунок зменшення клінічних ознак та колонізації цією бактерією організму господаря. Більшість вакцин ґрунтується на міжнародних еталонних штамах без урахування сучасної епізоотичної ситуації щодо гемофільозу на відповідних територіях. Проведено ряд лабораторних дослідів із встановлення антигенної та імуногенної активності на дослідній птиці інактивованої трьохвалентної вакцини проти гемофільозу курей з використанням епізоотично актуальних ізолятів Av. paragallinarum (штам «SS 6/20», серотип A; штам «SS 7̸20», серотип B; штам «SS 6/20», серотип C). Оптимальним інактивантом для отримання бактеріальної сировини є формальдегід у кінцевій концентрації 0,5 % та режиму — 48 год та температури 37 °С. Виготовлено три експериментальні зразки вакцини з використанням суміші інактивованих антигенів Av. paragallinarum трьох серотипів (1:1:1) та ад’ювантів (зразок № 1 – АГ + «ГОА»; № 2 –АГ + «ГОА+сапонін»; №3 – АГ + «Montanide ISA 70»). Для порівняння було використано комерційну вакцину, яка зареєстрована на території України. Щеплення птиці проводили дворазово в дозі 0,5 см3 з інтервалом 21 доба, підшкірно, в ділянку середньої третини шиї. Досліджені експериментальні зразки № 2 та № 3 за антигенною активністю не поступаються комерційній вакцині, рівень антитіл коливається від 1:64 до 1:512. Імуногенна активність цих зразків становить 80-100 % у порівнянні з комерційною вакциною (група птиці № 4), імуногенна активність якої знаходиться на тому ж рівні. Реплікація збудника гемофільозу курей з патматеріалу курчат щеплених комерційною вакциною (група № 4) та експериментальними вакцинами № 2 (група № 2, ад’ювант — ГОА+сапонін) і №3 (група № 3, ад’ювант — «Montanid ISA 70») та інфікованих контрольними штамами збуднику не відмічена. Ріст культур A. paragallinarum на збагачених поживних середовищах виявлено у дослідних групах № 1 (експериментальний зразок вакцини № 1 з використанням ад’юванту ГОА) та № 5 (контроль)
Ключові слова: Avibacterium paragallinarum, свійська птиця
Blackall P. J. et al. Reclassification of Pasteurella gallinarum, [Haemophilus] paragallinarum, Pasteurella avium and Pasteurella volantium as Avibacterium gallinarum gen. nov., comb. nov., Avibacterium paragallinarum comb. nov., Avibacterium avium comb. nov. and Avibacterium volantium comb. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2005. Vol. 55, Pt. 1. P. 353–362. DOI: https://doi.org/10.1099/ijs.0.63357-0.
Guo M. et al. The protective efficacy of an inactivated vaccine against Avibacterium paragallinarum field isolates. Veterinary Sciences. 2022. Vol. 9, No 9. P. 458. DOI: https://doi.org/10.3390/vetsci9090458.
Blackall P. J., Soriano-Vargas E. Chapter 20. Infectious coryza and related bacterial infections // Diseases of Poultry / Ed. D. E. Swayne. 13th ed. Ames: John Wiley & Sons, 2013. P. 859–873. DOI: https://doi.org/10.1002/9781119421481.ch20.
Mohan K, Dziva F, Chitauro D. Pasteurella gallinarum: Zimbabwean experience of a versatile pathogen. The Onderstepoort Journal of Veterinary Research. 2000. Vol. 67. P. 301–305.
Mushin R, Bock R, Abrams M. Studies on Pasteurella gallinarum. Avian Pathology. 1977. Vol. 6. P. 415–423. DOI: https://doi.org/10.1080/03079457708418250.
Muhairwa A. P. et. al. Occurrence of Pasteurella multocida and related species in village free ranging chickens and their animal contacts in Tanzania. Veterinary Microbiology. 2001. Vol. 78. P. 139–153. DOI: https://doi.org/10.1016/s0378-1135(00)00296-0.
Blackall P. J, Soriano‐Vargas E. Infectious coryza and related bacterial infections // Diseases of Poultry / Ed. D. E. Swayne. 14th ed. Hoboken: Wiley-Blackwell, 2020. P. 890–906. DOI: https://doi.org/10.1002/9781119371199.ch20.
Frederiksen W, Tønning B. Possible misidentification of Haemophilus aphrophilus as Pasteurella gallinarum. Clin Infect Dis. 2001. Vol. 32. P. 987–989. DOI: https://doi.org/10.1086/319358.
Ahmed K. et al. Pasteurella gallinarum neonatal meningitis. Clin Microbiol Infect. 2002. Vol. 8. P. 55–57. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-0691.2002.00354.x.
Gallardo R. A. et al. Infectious Coryza: Persistence, Genotyping, and Vaccine Testing. Avian Diseases. 2020. Vol. 64. P. 157–165. DOI: https://doi.org/10.1637/0005-2086-64.2.157.
Morales-Erasto, F. et al. Coinfection of Avibacterium paragallinarum and Ornithobacterium rhinotracheale in Chickens from Peru. Avian Diseases. 2015. Vol. 60, No1. P. 75–78. DOI: https://doi.org/10.1637/11265-082015-ResNote.1.
Crispo M, et al. Otitis and meningoencephalitis associated with infectious coryza (Avibacterium paragallinarum) in commercial broiler chickens. J Vet Diagn Invest. 2018. Vol. 30, No 5. P. 784–788. DOI: https://doi.org/10.1177/1040638718792964.
Paudel S, Hess M, Hess C. Coinfection of Avibacterium paragallinarum and Gallibacterium anatis in Specific-Pathogen-Free Chickens Complicates Clinical Signs of Infectious Coryza, Which Can Be Prevented by Vaccination. Avian Dis. 2017. Vol. 61, No 1. P. 55–63. DOI: https://doi.org/10.1637/11481-081016-reg.
Crispo M. et al. Characterization of an Outbreak of Infectious Coryza (Avibacterium paragallinarum) in Commercial Chickens in Central California. Avian Dis. 2019. Vol. 63. P. 486–494. DOI: https://doi.org/10.1637/19-00081.1.
Mei C. et al. Concurrent infection of Avibacterium paragallinarum and fowl adenovirus in layer chickens. Poult Sci. 2020. Vol. 99, No 12. P. 6525–6532. DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.09.033.
Blackall P. J., Eaves L. E., Rogers D. G. Proposal of a New Serovar and Altered Nomenclature for Haemophilus paragallinarum in the Kume Hemagglutinin Scheme. J. Clin. Microbiol. 1990. Vol. 28. P. 1185–1187. DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.28.6.1185-1187.1990.
Kume K. et al. Serological classification of Haemophilus paragallinarum with a hemagglutinin system. J. Clin. Microbiol. 1983. Vol. 17. P. 958–964. DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.17.6.958-964.1983.
Caballero-Garcia M. et al. Pathogenicity of Avibacterium paragallinarum Strains from Peru and the Selection of Candidate Strains for an Inactivated Vaccine. Vaccines. 2022. Vol. 10, No 7. P. 1043. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines10071043.
Wahyuni A. E. T. H. et al. Isolation, identification, and serotyping of Avibacterium paragallinarum from quails in Indonesia with typical infectious coryza disease symptoms. Vet. World. 2018. Vol. 11. P. 519–524. DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2018.519-524.
Blackall P. J. Antimicrobial Drug Resistance and the Occurrence of Plasmids in Haemophilus paragallinarum. Avian Dis. 1988. Vol. 32. P. 742-247. DOI: https://doi.org/10.2307/1590993.
Hsu Y., Shieh H., Chen W. Antimicrobial Susceptibility, Plasmid Profiles and Haemocin Activities of Avibacterium paragallinarum Strains. Vet. Microbiol. 2007. Vol. 124. P. 209–218. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2007.04.024.
Luna-Galaz G. A., et al. Antimicrobial sensitivity of Avibacterium paragallinarum isolates from four Latin American countries. Avian Diseases. 2016. Vol. 60, No 3. P. 673–676. DOI: https://doi.org/10.1637/11398-022616-resnote.1.
Nhung N. T., Chansiripornchai N., Carrique-Mas J. J. Antimicrobial resistance in bacterial poultry pathogens: A review. Frontiers in Veterinary Science. 2017. Vol. 4. P. 126. DOI: https://doi.org/10.3389/fvets.2017.00126.
Chukiatsiri K. et al. Serovar identification, antimicrobial sensitivity, and virulence of Avibacterium paragallinarum isolated from chickens in Thailand. Avian Dis. 2012. Vol. 56, No 2. P. 359–364. DOI: https://doi.org/10.1637/9881-080811-reg.1.
Nielsen S. S. et al. 2021. Scientific Opinion on the assessment of animal diseases caused by bacteria resistant toantimicrobials: Poultry. EFSA Journal. 2021. Vol. 19, No 12. P. e07114. DOI: https://doi.org/10.2903/j.efsa.2021.7114.
Huberman Y. D., Bueno D. J., Terzolo H. R. Evaluation of the protection conferred by a disinfectant against clinical disease caused by Avibacterium paragallinarum serovars A, B, and C from Argentina. Avian Diseases. 2005. Vol. 49, No 4. P. 588–591. DOI: https://doi.org/10.1637/7374-050405r.1.
Bragg R. R. Limitation of the spread and impact of infectious coryza through the use of a continuous disinfection programme. Onderstepoort J Vet Res. 2004. Vol. 71, No 1. P. 1–8. DOI: https://doi.org/10.4102/ojvr.v71i1.280.
Patil V. V., Mishra D., Mane D. V. 16S ribosomal RNA sequencing and molecular serotyping of Avibacterium paragallinarum isolated from Indian field conditions. Vet World. 2017. Vol. 10, No 8. P. 1004–1007. DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2017.1004-1007.
Ahmadi B., Nasri M. Prevalence of poultry bacterial diseases in different altitudes of Ilam province. Veterinary Research and Biological Products. 2018. Vol. 31, No 1. P. 87–92.
Nouri A. et al. Isolation, identification and antimicrobial susceptibility of Avibacterium paragallinarum from backyard chicken in retail markets of Karaj and Tehran cities, Iran. Archives of Razi Institute. 2020. Vol. 76. P. 1047–1053. DOI: https://doi.org/10.22092/ari.2020.343173.1502.
Han M. S. et al. The current epidemiological status of infectious coryza and efficacy of PoulShot Coryza in specific pathogen-free chickens. J Vet Sci. 2016. Vol. 30, No 17. P. 323–330. DOI: https://doi.org/10.4142/jvs.2016.17.3.323.
Beiranvand S. et al. Novel NAD-independent Avibacterium paragallinarum: Isolation, characterization and molecular identification in Iran. Vet Med Sci. 2022. Vol. 8, No 3. P. 1157-1165. DOI: https://doi.org/10.1002/vms3.754.
Page L. A. Haemophilus infections in chickens. I. Characteristics of 12 Haemophilus isolates recovered from diseased chickens. Am. J. Vet. Res. 1962. Vol. 23. P. 85–95.
Bragg R. R., Coetzee L., Verschoor J. A. Changes in the incidences of the different serovars of Haemophilus paragallinarum in South Africa: a possible explanation for vaccination failures. Onderstepoort J. Vet. Res. 1996. Vol. 63. P. 217–226.
Terzolo H. R., Sandoval V. E., Pondal F. G. Evaluation of Inactivated Infectious Coryza Vaccines in Chickens Challenged by Serovar B Strains of Haemophilus paragallinarum. Avian Pathol. 1997. Vol. 26. P. 365–376. DOI: https://doi.org/10.1080/03079459708419219.
Xu Y. et al. Characterization of emergent Avibacterium paragallinarum strains and the protection conferred by infectious coryza vaccines against them in China. Poult Sci. 2019. Vol. 98, No 12. P. 6463–6471. DOI: https://doi.org/10.3382/ps/pez531.
Rimler R. B. et al. A growth medium for the production of a bacterin for immunization against infectious coryza. Avian Diseases. 1975. Vol. 19. P. 318–322.
Coetzee L., Strydom, G. S., Rogers E. J. The value of oil-adjuvant vaccines in the control of Haemophilus paragallinarum infection (infectious coryza) in egg producing birds in South Africa. Developments in Biological Standardisation. 1982. Vol. 51. P. 169–180.
Чегринець А. І., Салій О. О., Любецький О. В. Дослідження впливу ад’ювантів на фізичні властивості інактивованої вакцини проти хвороби Ньюкасла. Технологічні та біофармацевтичні аспекти створення лікарських препаратів різної направленості дії: матеріали V Міжнародної науково-практичної інтернет-конференції, м. Харків, 26 листопада 2020 року. Харків : Вид-во НФаУ, 2020. С. 496–497.
Matsumoto M., Yamamoto R. A broth bacterin against infectious coryza: immunogenicity of various preparations. Avian Diseases. 1971. Vol. 15. P. 109–117.
Kume K., Sawata A., Nakase Y. Relationship between protective activity and antigen structure of Haemophilus paragallinarum serotypes 1 and 2. American Journal of Veterinary Research. 1980. Vol. 41. P. 97–100.
Reid G. G., Blackall P. J. Comparison of adjuvants for an inactivated infectious coryza vaccine. Avian Diseases. 1987. Vol. 31. P. 59–63.
Davis R. B. et al. Efficacy studies on Haemophilus gallinarum bacterin preparations. American Journal of Veterinary Research. 1976. Vol. 37. P. 219-222.
Blackall P. J., Reid G. G. Further Efficacy Studies on Inactivated, Aluminum-Hydroxide-Adsorbed Vaccines against Infectious Coryza. Avian Diseases. 1987. Vol. 31. P. 527–532. DOI: https://doi.org/10.2307/1590735.
Matsumoto M., Yamamoto R. Protective quality of an aluminum hydroxideabsorbed broth bacterin against infectious coryza. American Journal of Veterinary Research. 1975. Vol. 36. P. 579–582.
Kume K., Sawata A., Nakase Y. Haemophilus infections in chickens. 3. Immunogenicity of serotypes 1 and 2 strains of Haemophilus paragallinarum. Japanese Journal of Veterinary Science. 1980. Vol. 42. P. 673–680. DOI: https://doi.org/10.1292/jvms1939.42.673.
Iritani Y., Iwaki S. Yamaguchi, T. Biological activity of crude polysaccharideextracted from two different immunotype strains of Hemophilus gallinarum in chickens. Avian Diseases. 1981. Vol. 25. P. 29–37.
Konno Y., NakaseY. Purification of endotoxin of Haemophilus gallinarum and their biological activity. Japanese Journal of Bacteriology. 1977. Vol. 32. P. 212.
Droual R. et al. Investigation of problems associated with intramuscular breast injection of oil-adjuvanted killed vaccines in chickens. Avian Diseases. 1990. Vol. 34. P. 473–478.
