DOI: 10.36016/VM-2021-107-7



Ветеринарна медицина: міжвідомчий тематичний науковий збірник. 2021. Випуск 107. С. 42–50.


Завантажити повний текст (PDF)


ДЕЯКІ АСПЕКТИ ЕФЕКТИВНОГО КОНТРОЛЮ ІНФЕКЦІЙНОГО РИНОТРАХЕЇТУ ВЕЛИКОЇ РОГАТОЇ ХУДОБИ В КРАЇНАХ ЄВРОПИ


Корнєйков О. М., Стегній Б. Т., Олешко А. Ю., Бородай Н. І., Коровін І. В.

Національний науковий центр «Інститут експериментальної і клінічної ветеринарної медицини», Харків, Україна, e-mail: korneykov@ukr.net

Головко В. О., Северин Р. В., Аль Джабарі Мунір

Державний біотехнологічний університет, Харків, Україна

Наведено дані щодо епізоотичної ситуації з інфекційного ринотрахеїту великої рогатої худоби в країнах Європейського континенту. Більшість країн, які є членами Всесвітньої організації з охорони здоров’я тварин, запровадили на своїй території протиепізоотичні заходи, які передбачають спостереження, звітування, моніторинг або скринінг, а також контроль переміщення тварин усередині країни та запобіжні заходи на кордоні. Відзначено, що стале благополуччя щодо захворювання можливе лише за умов впровадження обов’язкових заходів контролю на державному рівні, які базуються на видаленні інфікованих епізоотичним штамом вірусу серопозитивних тварин зі стад одночасно з або без використання вакцин. У більшості країн Європейського Союзу запроваджені програми ерадикації вірусу ІРТ, які базуються на стратегіях дослідження та видалення, а також диференціації вакцинованих від інфікованих тварин. Як показав досвід скандинавських країн найбільш ефективною є схема ерадикації збудника ІРТ шляхом забою інфікованих тварин, але це є можливим лише за умов невисокого рівня інфікованості поголів’я. Найбільш економічно доцільною стратегією контролю ІРТ у стадах з високою інфікованістю тварин є використання маркерних вакцин, з подальшою диференціацією вакцинованих від інфікованих тварин і вилученням зі стада останніх. При досягненні низького рівня серопозитивності стада доцільним є впровадження стратегії виявлення та забою

Ключові слова: епізоотична ситуація, ерадикація, маркерні вакцини


Список літератури

Straub O. C. Infectious bovine rhinotracheitis virus. History and recent developments. Developments in Biological Standardization. 1975. Vol. 28. P. 530–533. PMID: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/165129.

Ackermann M., Müller H. K., Bruckner L., Kihm U. Eradication of Infectious bovine rhinotracheitis in Switzerland: review and prospects. Veterinary Microbiology. 1990. Vol. 23, iss. 1–4. P. 365–370. DOI: https://doi.org/10.1016/0378-1135(90)90168-u.

Nuotio L., Neuvonen E., Hyytiäinen M. Epidemiology and eradication of Infectious bovine rhinotracheitis/Infectious pustular vulvovaginitis (IBR/IPV) virus in Finland. Acta Veterinaria Scandinavica. 2007. Vol. 49, iss. 1. P. 3. DOI: https://doi.org/10.1186/1751-0147-49-3.

Wyler R., Engels M., Schwyzer M. Infectious bovine rhinotracheitis / Vulvovaginitis (BHV1). In: Wittmann G., eds. Herpesvirus Diseases of Cattle, Horses, and Pigs. Developments in Veterinary Virology, Vol. 9. Boston, MA : Springer, 1989. P. 1–72. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4613-1587-2_1.

Keuser V., Schynts F., Detry B., Collard A., Robert B., Vanderplasschen A., Pastoret P. P., Thiry E. Improved antigenic methods for differential diagnosis of bovine, caprine, and cervine alphaherpesviruses related to bovine herpesvirus 1. Journal of Clinical Microbiology. 2004. Vol. 42, iss. 3. P. 1228–1235. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.42.3.1228-1235.2004.

Biswas S., Bandyopadhyay S., Dimri U., Patra P. H. Bovine herpesvirus-1 (BHV-1) — a re-emerging concern in livestock: a revisit to its biology, epidemiology, diagnosis, and prophylaxis. The Veterinary Quarterly. 2013. Vol. 33, iss. 2. P. 68–81. DOI: https://doi.org/10.1080/01652176.2013.799301.

Straub O. C. Advances in BHV1 (IBR) research. Deutsche Tierarztliche Wochenschrift. 2001. Vol. 108, iss. 10. P. 419–422. PMID: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11721589.

Wentink G. H., van Oirschot J. T., Verhoeff J. Risk of infection with bovine herpes virus 1 (BHV1): a review. The Veterinary Quarterly. 1993. Vol. 15, iss. 1. P. 30–33. DOI: https://doi.org/10.1080/01652176.1993.9694365.

Areda D., Chigerwe M., Crossley B. Bovine herpes virus type-4 infection among postpartum dairy cows in California: risk factors and phylogenetic analysis. Epidemiology and Infection. 2018. Vol. 146, iss. 7. P. 904–912. DOI: https://doi.org/10.1017/S0950268818000791.

Bellino C., Iussich S., Biasato I., Peletto S., Caruso C., Gianella P., Cagnasso A., D’Angelo A. Potential pathogenetic role of bovine herpesvirus 4 in two dairy cows with dermatitis-pyrexia-hemorrhagic syndrome. Journal of Clinical Microbiology. 2015. Vol. 53, iss. 8. P. 2763–2767. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.00717-15.

Kramps J. A., Quak S., Weerdmeester K., van Oirschot J. T. Comparative study on sixteen enzyme-linked immunosorbent assays for the detection of antibodies to bovine herpesvirus 1 in cattle. Veterinary Microbiology. 1993. Vol. 35, iss. 1–2. P. 11–21. DOI: https://doi.org/10.1016/0378-1135(93)90112-k.

Jacevičius E., Šalomskas A., Milius J., Petkevičius S., Mockeliūnas R., Jacevičienė I., Lelešius R., Pridotkas G. (2008). Prevalence and control measures of Infectious bovine rhinotracheitis in Lithuania. Veterinārmedicīnas Raksti 2008 : Animals. Health. Food Hygiene : proceedings of international scientific conference, Jelgava, Latvia, 14th November 2008. Jelgava, 2008. P. 49–53. URL: https://llufb.llu.lv/conference/animal-health-food/2008/Animal-health-foodhigiene-proceedings-2008-49-53.pdf.

Ackermann M., Engels M. Pro and contra IBR-eradication. Veterinary Microbiology. 2006. Vol. 113, iss. 3–4. P. 293–302. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2005.11.043.

Raaperi K., Orro T., Viltrop A. Epidemiology and control of bovine herpesvirus 1 infection in Europe. Veterinary Journal. 2014. Vol. 201, iss. 3. P. 249–256. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2014.05.040.

The World Organization for Animal Health (OIE). Infectious bovine rhinotracheitis/Infectious pustular vulvovaginitis. OIE World Animal Health Information System (OIE-WAHIS). URL: https://wahis.oie.int/#/dashboards/country-or-disease-dashboard. (Accessed: 19.11.2020).

Scientific Committee on Animal Health and Animal Welfare. Report on Bovine Herpesvirus 1 (BHV1) marker vaccines and the accompanying tests. Adopted 25 October 2000. European Commission, Sanco/C3/AH/R20/2000. Brussels, Belgium : European Commission, 2000. 36 pp. URL: https://food.ec.europa.eu/system/files/2020-12/sci-com_scah_out49_en.pdf.

Прохорятова О. В., Корнєйков О. М., Кольчик О. В., Ісаков М. М. Визначення основних причин поширення інфекційних пневмоентеритів великої рогатої худоби в сучасних умовах. Ветеринарна медицина : міжвід. темат. наук. зб. 2017. Вип. 103. С. 209–213. URL: http://www.jvm.kharkov.ua/sbornik/103/3_47.pdf.

Корнєйков О. М., Прохорятова О. В., Кольчик О. В., Олешко А. Ю., Бородай Н. І., Аль Джабарі М. Ефективність різних підходів профілактики та боротьби з інфекційними пневмоентеритами ВРХ. Ветеринарна медицина : міжвід. темат. наук. зб. 2019. Вип. 105. С. 46–53. DOI: https://doi.org/10.36016/VM-2019-105-9.

Weiss M., Anziliero D., Martins M., Weiblen R., Flores E. F. Safety and immunogenicity of a glycoprotein E gene-deleted bovine herpesvirus 1 strain as a candidate vaccine strain. Pesquisa Veterinária Brasileira. Vol. 36, iss. 11. P. 1067–1074. DOI: https://doi.org/10.1590/s0100-736x2016001100002.

Romera S. A., Puntel M., Quattrocchi V., Del Médico Zajac P., Zamorano P., Blanco Viera J., Carrillo C., Chowdhury S., Borca M. V., Sadir A. M. (2014). Protection induced by a glycoprotein E-deleted bovine herpesvirus type 1 marker strain used either as an inactivated or live attenuated vaccine in cattle. BMC Veterinary Research. 2014. Vol. 10. P. 8. DOI: https://doi.org/10.1186/1746-6148-10-8.

Strube W., Auer S., Block W., Heinen E., Kretzdorn D., Rodenbach C., Schmeer N. A gE deleted infectious bovine rhinotracheitis marker vaccine for use in improved bovine herpesvirus 1 control programs. Veterinary Microbiology. 1996. Vol. 53, iss. 1–2. P. 181–189. DOI: https://doi.org/10.1016/s0378-1135(96)01246-1.

Vonk Noordegraaf A., Labrovic A., Frankena K., Pfeiffer D. U., Nielen M. Simulated hazards of loosing infection-free status in a Dutch BHV1 model. Preventive Veterinary Medicine. 2004. Vol. 62, iss. 1. P. 51–58. DOI: https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2003.09.001.

Vonk Noordegraaf A., Buijtels J. A., Dijkhuizen A. A., Franken P., Stegeman J. A., Verhoeff J. An epidemiological and economic simulation model to evaluate the spread and control of Infectious bovine rhinotracheitis in the Netherlands. Preventive Veterinary Medicine. 1998. Vol. 36, iss. 3. P. 219–238. DOI: https://doi.org/10.1016/s0167-5877(98)00081-6.

Van Oirschot J. T., Kaashoek M. J., Maris-Veldhuis M. A., Weerdmeester K., Rijsewijk F. A. An enzyme-linked immunosorbent assay to detect antibodies against glycoprotein gE of bovine herpesvirus 1 allows differentiation between infected and vaccinated cattle. Journal of Virological Methods. 1997. Vol. 67, iss. 1. P. 23–34. DOI: https://doi.org/10.1016/s0166-0934(97)00073-6.

Van Drunen Littel-van den Hurk S. Rationale and perspectives on the success of vaccination against bovine herpesvirus-1. Veterinary Microbiology. 2006. Vol. 113, iss. 3–4. P. 275–282. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2005.11.002.

Trapp S., König P., Beer M. (2003). Konventionelle und markierte BHV-1-Impfstoffe in Deutschland: Eine kurze Übersicht. Berliner und Münchener tierärztliche Wochenschrift. 2003. Bd. 116, Hf. 5–6. S. 208–215. PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12784554.

Böttcher J., Boje J., Janowetz B., Alex M., König P., Hagg M., Götz F., Renner K., Otterbein C., Mages J., Meier N., Wittkowski G. Epidemiologically non-feasible singleton reactors at the final stage of BoHV1 eradication: serological evidence of BoHV2 cross-reactivity. Veterinary Microbiology. 2012. Vol. 159, iss. 3–4. P. 282–290. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2012.04.017.

Nardelli S., Farina G., Lucchini R., Valorz C., Moresco A., Dal Zotto R., Costanzi C. Dynamics of infection and immunity in a dairy cattle population undergoing an eradication programme for Infectious bovine rhinotracheitis (IBR). Preventive Veterinary Medicine. 2008. Vol. 85, iss. 1–2. P. 68–80. DOI: https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2008.01.001.

Graat E. A., de Jong M. C., Frankena K., Franken P. Modelling the effect of surveillance programmes on spread of bovine herpesvirus 1 between certified cattle herds. Veterinary Microbiology. 2001. Vol. 79, iss. 3. P. 193–208. DOI: https://doi.org/10.1016/s0378-1135(00)00356-4.

Makoschey B., Bielsa J. M. Europe’s progress in IBR virus eradication. International Dairy Topics. 2007. Vol. 6, iss. 2. P. 13–14. URL: http://www.positiveaction.info/pdfs/articles/dt6.2p13.pdf.

Pospisil R., Krocil O., Kunz P. (2019). The analysis of damping of the Bovine Rhinotracheitis National Recovery Program in the Czech Republic between 2006–2016. Bulgarian Journal of Agricultural Science. 2019. Vol. 25, iss. 2. P. 396–402. URL: https://www.agrojournal.org/25/02-25.pdf.

Hostnik P., Černe D., Mrkun J., Starič J., Toplak I. Review of infections with bovine herpesvirus 1 in Slovenia. Frontiers in Veterinary Science. 2021. Vol. 8. P. 676549. DOI: https://doi.org/10.3389/fvets.2021.676549.

Mandelik R., Bires J., Ozsvari L., Hodnik J. J., Vilcek, S. Infectious Bovine Rhinotracheitis Control Program in Slovakia. Frontiers in Veterinary Science. 2021. Vol. 8. P. 675521. DOI: https://doi.org/10.3389/fvets.2021.675521.

image description

2010-2024 © ННЦ ІЕКВМ Всі права захищено.

image description