Метою роботи було вивчити ефективність комбінованої кормової добавки НІКАМАКС® (порошок для перорального застосування), виробництва ТОВ “АТ Біофарм” (Україна), активними фармацевтичними інгредієнтами якої є нікарбазин та мадураміцин амонію, за кокцидіозу домашньої птиці (курчат-бройлерів), штучно інфікованої кокцидіями роду Eimeria. Курчата, залучені до експерименту зі штучним зараженням кокцидіозом, були розділені на групи в день вилуплення (одна дослідна група і дві контрольні групи). Птиці дослідної групи (група ІЛ) і першої контрольної групи (група ІНЛ) інокулювали на 14 день життя спороносні ооцисти Eimeria acervulina, Eimeria necatrix і Eimeria tenella. Для інокуляції курчат-бройлерів використовували ооцисти еймерій, отримані з місцевих бройлерних ферм. Ідентифікацію збудників кокцидіозу проводили за видовою та морфологічною особливостями ооцист еймерій. Кожне курча з групи ІЛ і групи ІНЛ отримало per os а з водою в загальному 100000 E. acervulina, 10000 E. necatrix і 10000 спорульованих ооцист E. tenella. Птиці групи ІЛ кормову добавку НІКАМАКС® застосовували з кормом з 1 дня життя у дозі 0,5 г на 1 кг корму. Групі ІНЛ кормову добавку НІКАМАКС® не застосовували. Курчата, яких не інокулювали і не лікували, склали другу контрольну групу (група ННЛ). Основними критеріями демонстрації ефективності кормової добавки НІКАМАКС® були: показник ураження кишечнику; кількість ооцист в фекаліях; смертність та захворюваність птиці, пов’язані з кокцидіозом. Додатковими показниками ефективності кормової добавки були: середній показник живої маси; середньодобовий приріст живої маси птиці; середньодобове споживання корму, співвідношення кількості спожитого корму до приросту; дані моніторингу стану здоров’я птиці упродовж експерименту. Підрахунок кількості ооцист у фекаліях курчат проводили до інокуляції (0 день), на 7, 14 і 21 день після інокуляції. Для підрахунку кількості ооцист еймерій у фекаліях використовували методику якісних досліджень за Фюллеборном та кількісних досліджень за Мак Мастером. Для оцінки ступеня ураження кишечника робили забій та розтин 5 курчат з кожної групи на 7, 14 і 21 день після інокуляції. Ураження кишечника курчат кокцидіозом оцінювали за шкалою від 0 до 4 балів за методом Джонсона та Рейда: 0 — відсутність ураження, 1 — дуже легке, 2 — легке, 3 — помірне і 4 — важке. Курчат зважували перед інокуляцією (0 день) та на 7, 14 і 21 день після інокуляції. Середньодобовий рівень споживання кормів визначали за періоди від 0 до 7 дня, від 7 до 14 дня, від 14 до 21 дня і від 0 до 21 дня після інокуляції. Стан здоров’я усієї птиці, включеної у дослідження, підлягав постійному моніторингу лікарем ветеринарної медицини. Інтенсивність інвазії у групі ІЛ на 7 день після інокуляції становив 3140 ооцист/г калу і знизився до 2210 ооцист/г калу (у 1,42 раза) на 14 день. На 21 добу експерименту виділення ооцист еймерій у курчат, яким застосовували кормову добавку НІКАМАКС® зменшилося до 100 ооцист/г калу. У той же час, показник інтенсивності інвазії в групі ІНЛ з 7 до 21 дня після інокуляції зріс утричі — з 3760 до 11400 ооцист/г калу. Зменшення кількості ооцист в калі курчат групи ІЛ пов’язане з придушенням процесу шизогонії кокцидіостатиком, що призводило до меншого пошкодження кишечнику, порівняно з інфікованим, але не пролікованим контролем. Якщо, показники ураження кишечнику курчат у групах ІЛ і ІНЛ на 7 день після інокуляції Eimeria spp. були майже однаковими, то на 14 день ураженість кишечнику курчат групи ІНЛ зростала, а курчат групи ІЛ зменшувалася. На 21 день після інокуляції позитивний вплив кормової добавки НІКАМАКС® на ступінь ураженості збільшується (середня оцінка — 0,7 балів). Тоді, як в інфікованої птиці групи ІНЛ, ураженість кишечнику залишалася на високому рівні (середня оцінка — 2,4 бали). Високий рівень смертності (53,3 %) за період експерименту фіксували серед курчат групи ІНЛ. Водночас, застосування кормової добавки НІКАМАКС® суттєво зменшило смертність серед курчат групи ІЛ (10 % за дослідний період). Поступово зменшувалася і захворюваність птиці у цій групі — на 21 день експерименту клінічні ознаки кокцидіозу спостерігали лише в одного бройлера. Додавання курчатам-бройлерам до корму кормової добавки НІКАМАКС® сприяло збільшенню приростів живої маси птиці, інфікованої E. acervulina, E. tenella і E. necatrix (група ІЛ), а також зниженню коефіцієнту конверсії корму, порівняно з групою інфікованої птиці (ІНЛ), якій кормову добавку не застосовували. Узагальнена оцінка первинних та допоміжних показників ефективності, отриманих в дослідженні за штучного інфікування E. acervulina, E. tenella і E. necatrix, свідчить, що кормова добавка НІКАМАКС®, виробництва ТОВ «АТ «Біофарм», є ефективним кокцидіостатиком для профілактики та лікування кокцидіозу в курчат-бройлерів, викликаних кокцидіями роду Eimeria
Ключові слова: нікарбазин, мадураміцин амонію
McDougald L. R. Protozoal infections. Diseases of Poultry / Saif, Y.M. et al. (Eds.). Twelfth ed. Blackwell Publishing, 2008. P. 1067–1085.
Muthamilselvan T., et al. Herbal remedies for coccidiosis control: A review of plants, Compounds, and Anticoccidial Actions. Natural Products for Infectious Diseases. 2016. Vol. 2016. Article ID 2657981. DOI: https://doi.org/10.1155/2016/2657981.
Shirley M. W., Smith A. L., Tomley F. M. The biology of avian Eimeria with an emphasis on their control by vaccination. Advances in parasitology. 2005. Vol. 60. P. 285–330. DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-308X(05)60005-X.
Blake D. P. et al. Re-calculating the cost of coccidiosis in chickens. Vet Res. 2020. Vol. 51. P. 115. DOI: https://doi.org/10.1186/s13567-020-00837-2.
Blake D. P., Tomley F. M. Securing poultry production from the ever-present Eimeria challenge. Trends in Parasitology. 2014. Vol. 30. P. 12–19. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pt.2013.10.003.
Williams R. B. A compartmentalised model for the estimation of the cost of coccidiosis to the world’s chicken production industry. International Journal for Parasitology. 1999. Vol. 29. P. 1209–1229. DOI: https://doi.org/10.1016/s0020-7519(99)00086-7.
Maharana B. R., Tewari A. K. Control of poultry coccidiosis: changing trends. J. Parasit. Dis. 2011. Vol. 35, No 1. P. 10-17. DOI: https://doi.org/10.1007/s12639-011-0034-7.
Witcombe D. M., Smith N. C. Strategies for anti-coccidial prophylaxis. Parasitol. 2014. Vol. 141, No 11. P. 1379-1389. DOI: https://doi.org/10.1017/s0031182014000195.
McDougald L. R., Reid W. M. Coccidiosis. In: Diseases of Poultry / Calnek B. W. (ed.). 9th edition. New Delhi, India : Affiliated East West Press Pvt. Ltd., 1994.
Ryley J. F., Betts M. J. Chemotherapy of chicken coccidiosis. Advances in Pharmacology and Chemotherapy. 1973. Vol. 11. P. 221–293. DOI: https://doi.org/10.1016/s1054-3589(08)60459-7.
Chapman H. D. Drug resistance in avian coccidia (a review). Veterinary Parasitology. 1984. Vol. 15. P. 11–27. DOI: https://doi.org/10.1016/0304-4017(84)90106-7.
Chapman H. D. Biochemical, genetic and applied aspects of drug resistance in Eimeria parasites of the fowl. Avian Pathology. 1997. Vol. 26. P. 221–244. DOI: https://doi.org/10.1080/03079459708419208.
Bafundo K. W., Jeffers T. K. Selection for Resistance to Monensin, Nicarbazin, and the Monensin Plus Nicarbazin Combination. Poult. Sci. 1990. Vol. 69. P. 1485–1490. DOI: https://doi.org/10.3382/ps.0691485.
Abbas R. Z. et al. Options for integrated strategies for the control of avian coccidiosis. Int. J. Agric. Biol. 2012. Vol. 14. P. 1014–1020. URL: https://www.fspublishers.org/published_papers/3693_..pdf.
Scientific Opinion on the safety and efficacy of Koffogran (nicarbazin) as a feed additive for chickens for fattening. EFSA Journal. 2010. Vol. 8, No 3. Article ID 1551. DOI: https://doi.org/10.2903/j.efsa.2010.1551.
16. Scientific Opinion on safety and efficacy of Cygro® 10G (maduramicin ammonium) for chickens for fattening. EFSA Journal. 2011. Vol. 9, No 1. Article ID 1952. DOI: https://doi.org/10.2903/j.efsa.2011.1952.
Chapman H. D. Studies on the sensitivity of field isolates of Eimeria maxima to combinations of anticoccidial drugs. Avian Pathology. 1980. Vol. 9. P. 67–76. DOI: https://doi.org/10.1080/03079458008418387.
Long P. L., Johnson K., Mackenzie M. E. Anticoccidial activity of combinations of narasin and nicarbazin. Poultry Science. 1988. Vol. 67. P. 248–252. DOI: https://doi.org/10.3382/ps.0670248.
Noack S., Chapman H. D., Selzer P. M. Anticoccidial drugs of the livestock industry. Parasitol. Res. 2019. Vol. 118. P. 2009–2026. DOI: https://doi.org/10.1007/s00436-019-06343-5.
Wang Z. et al. Influence of monensin on cation influx and Na+ -K+ -ATPase activity of Eimeria tenella sporozoites in vitro. Journal of parasitology. 2006. Vol. 92, No 5. P. 1092–1096. DOI: https://doi.org/10.1645/GE-783R.1.
McDougald L. R., Galloway R. B. Eimeria tenella: Anticoccidial drug activity in cell cultures. Exp. Parasitol. 1973. Vol. 34. P. 189–196. DOI: https://doi.org/10.1016/0014-4894(73)90078-7.
Chapman H. D., Rathinam T. Focused review: The role of drug combinations for the control of coccidiosis in commercially reared chickens. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance. 2022. Vol. 18. P. 32–42. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2022.01.001.
Chapman H. D., Jeffers T. K. Vaccination of chickens against coccidiosis ameliorates drug resistance in commercial poultry production. Int. J. Parasitol. Drugs Drug Resist. 2014. Vol. 4. P. 214–217.
Гірковий А. Ю. та ін. Методичні рекомендації з діагностики, лікування та профілактики еймеріозу курей : затверджено науково-методичною радою Державної ветеринарної та фітосанітарної служби України. протокол № 1 від 19 грудня 2013 р. 2014. 32 с.
Johnson J., Reid W. M. Anticoccidial drugs: lesion scoring techniques in battery and floor-pen experiments with chickens. Exp. Parasitology. 1970. Vol. 28, No 1. P. 30-36. DOI: https://doi.org/10.1016/0014-4894(70)90063-9.
